ФЛ6000флуоресцентный прибор с двойной модуляцией хлорофилла

ФЛ6000Флуоресцентный прибор с двойной модуляцией хлорофилла FL3500 является последней обновленной версией флуоресцентного прибора с двойной модуляцией хлорофилла FL3500, предназначенного для углубленного изучения механизмов фотосинтеза микроводорослей, хлорофилла или кистоидных суспензий, таких как сине - зеленые водоросли или зеленые водоросли. Прибор имеет двухканальный измерительный контроль, который контролирует температуру измеренного образца и оснащен одним перевернутым светом (STF), встроенным в различные пользовательские программы измерения, которые могут выполнять различные углубленные международные исследования механизмов флуоресценции хлорофилла. Его основная структура состоит из оптической измерительной головки, содержащей стандартную чашку образцов суспензии со встроенными 3 наборами светодиодных источников и детектором сигналов PIN - диода с преобразованием 1 МГц / 16 бит AD. Усиление и время интегрирования преобразования AD можно контролировать с помощью программного обеспечения. Детектор измеряет флуоресцентные сигналы хлорофилла с временным разрешением до 4 мкс (1 мкс для быстрой версии).

Область применения:

·Характеристики фотосинтеза растений и анализ метаболических расстройств

·Обнаружение биологического и абиотического принуждения

·Исследование сопротивляемости или восприимчивости растений

·Исследование метаболического хаоса

·углублять механизма работы фотосинтетической системы

·Исследование стратегий фотосинтеза растений, подвергающихся принуждению

Типичный образец:

·Синие водоросли (синие бактерии)

·Зелёные водоросли

·хлорофилловая суспензия

·цистоидная суспензия

·Фрагменты растений

Функциональные характеристики:

·Встроенное измерение флуоресцентной индукции хлорофилла, измерение PAM (импульсная модуляция), измерение быстрой флуоресцентной динамики OJIP, кинетика QA - перекиси, преобразование S - состояния, флуоресцентная закалка хлорофилла и другие измерительные процедуры, являются наиболее полнофункциональным флуоресцентным прибором хлорофилла в мире

·Технология двойной модуляции, двухцветная модуляция измерительного света, с модулированным фотохимическим светом и непрерывным фотохимическим светом, измерение STF (однооборотная вспышка света), TTF (двухнедельная вращающаяся вспышка света) и MTF (многооборотная вспышка света) и настраиваемая технология FRR (Fast Repetition Rate)

·Стандартная версия с временным разрешением до 4 мкс, быстрая версияЭто флуоресцентный прибор с самым высоким разрешением хлорофилла во времени.

·Блок управления двухканальный, может быть подключен датчик температуры для контроля температуры, подключен блок измерения кислорода для измерения реакции Хилла и так далее

·Высокая чувствительность, минимальный предел обнаружения 100 нг Chla / L

·Измерять цвет и интенсивность света, фотохимического света, насыщенного моноинвертированного источника света можно настроить

·Хост оснащен цветным сенсорным дисплеем, который позволяет просматривать кривые экрана в режиме реального времени

Технические параметры:

·Экспериментальная программа: измерение эффекта люминесцентной индукции хлорофилла Kautsky; PAM (импульсная модуляция)Динамика люминесцентной закалкиИзмерения; Быстрые измерения флуоресцентной динамики OJIP; QA - Динамика перекиси; Преобразование состояния S; Быстрая люминесцентная индукция хлорофилла

• Параметры флуоресценции:

уПАМИзмерение динамики закалки флуоресценции: измерение кривой динамики закалки флуоресценции, можно рассчитать F₀ФМ, ФВ, Ф₀’,Fm’,Fv’,QY(II),NPQ,ΦPSII,Fv/Fm,Fv’/Fm’,Rfd,qN,qP,ЭТРБолее 50 параметров флуоресценции хлорофилла;

уОЖИПИзмерение быстрой флуоресцентной динамики: измерение кривой быстрой флуоресцентной динамики OJIP, вычисление F₀, FJ, Fi, Fm, Fv, VJ, Vi, Fm / F₀и FV/F₀, Fv / Fm, M0, площадь, фиксированная площадь, SM, SS, N, Phi_P₀Пси_₀и Phi_E₀и Phi_D₀, Phi_Pav, ABS / RC, TR₀/ РКи ET₀/ РКи DI₀/ РКБолее 20 соответствующих параметров;

уКА- Динамика повторного окисления (QA - reoxidation kinetics): измерение кривой кинетики QA - повторного окисления для согласования соответствующих амплитуд (A1, A2, A3) и временных констант (T1, T2, T3) в быстрой фазе (Fast phase), промежуточной фазе (Middle phase) и медленной фазе (Slow phase) в процессе QA - повторного окисления

уСПреобразование состояния (S - state test): измерение кривой затухания флуоресценции S - state test для расчета системы неактивного света II (PSII)_XКоличество центров реагирования

уИндукция флуоресценции вспышки (Flash Fluorescence Induction, FFL, только для быстрой версии): используется для расчета эффективной площади антенны, связи антенны и т.д.

уПредоставление пользовательской функции Protocol для достижения гетерогенности антенны PSIIа& PSIIбетаАналитическая площадь сечения эффективной антенны PSII (сПСIIИзмерение равнопараметров (с выбором настраиваемых функций)

уКА- Кривые динамики перекиси иИспытание в состоянии SКолебания флуоресценции (Ли，2010)

·Временная разрешающая способность (частота отбора проб): высокочувствительный детектор, стандартная версия с временным разрешением 4 мкс, быстрая версия с разрешением 1 мкс

·Минимальный предел обнаружения: стандартная версия 100ng Chla / L, быстрая версия 1 мкг Chla / L

·Модуль управления: оснащен цветным сенсорным дисплеем для просмотра кривых экрана в режиме реального времени

·Измерительная камера:

oИзмерение вспышки: 623 нм красного апельсина и 460 нм синего света, время вспышки 2 - 5 мкс

оОднооборотная насыщенная вспышка: максимальная сила света 170 000 мкмоль (photons) / м².s, время вспышки 20 - 50 мкс

oНепрерывный фотохимический свет: максимальная сила света 3500 мкмоль (photons) / м².s

oФлуоресцентный детектор: PIN - фотодиод

оADПреобразователь: 16 bit

оПробная пробирка: нижняя площадь 10 × 10 мм, объем 4 мл

• Индивидуальная измерительная камера (с выбором): может быть индивидуально настроена для измерения света, насыщенной вспышки и фотохимического цвета света (синий, синий, янтарный и т. Д.) и диапазона обнаружения (ChlA, ChlB)

• Источники света в дальней инфракрасной области спектра (выбранные): для измерения F₀"Длина волны 730 нм

·Модуль измерения кислорода (выбор): измерение выделения кислорода водорослями

·Температурный контроль (выбор): TR 6000 терморегулятор, диапазон температуры 5 - 60°C, точность 0,1°C

• Электромагнитное перемешивание (опция): используется для выравнивания образцов, предотвращения осаждения образцов, может регулироваться вручную или автоматически управляться программным обеспечением

• Интерфейс связи: RS232 последовательный порт / USB

FluorWin компаниейПрограммное обеспечение: Определение или создание экспериментальных схем, настроек управления источником света, вывода данных, аналитической обработки и отображения диаграмм

Типичное применение:

1. Исследователь Ван Цян из Института водной биологии Китайской академии наук использовал флуоресцентный прибор FL3500 для хлорофилла (модель до FL6000) и систему теплового высвобождения растений TL, чтобы доказать, что давление нитритов в первую очередь влияет на рецепторную сторону Synechocystis sp. PCC 6803 PSII (Zhan X, et al, 2017). Изучение этого механизма глубокого фотосинтеза часто требует сочетания этих двух инструментов.

2.Исследователь Пан Юн из Синьцзянского института экологии и географии Китайской академии наук и его исследовательская группа использовали флуоресцентный прибор FL3500 с хлорофиллом (модель до FL6000) для проведения углубленных токсикологических исследований водорослей, таких как тяжелые металлы, соли, токсичные соединения, гербициды, пестициды и антибиотики, в окружающей среде. Благодаря быстрой флуоресцентной динамике OJIP с высоким разрешением, уникальной для FL3500, кинетике QA - повторного окисления, S - преобразованию и другим флуоресцентным измерениям хлорофилла, были полностью раскрыты токсикологические механизмы и экологические последствия повреждения системы фотосинтеза водорослей различными концентрациями и временем обработки. В настоящее время исследовательская группа Panlong опубликовала более 20 статей высокого уровня в международных журналах SCI и основных отечественных журналах с использованием FL3500 (модели до FL6000).

Место рождения: ЧешскаяРеспублика

Ссылки:

1. Manaa A, et al. 2019. Толерантность солености киноа (Киноа ChenopodiumWilld) по оценке ультраструктуры хлоропласта и фотосинтетических характеристик. Экологическая и экспериментальная ботаника 162: 103-114

2. Ю З. и др. 2019. Чувствительность Chlamydomonas reinhardtii к кадмиевому стрессу связана с фототаксисом. Экологическая наука: процессы и воздействие 21: 1011-1020

3. Liang Y, et al. 2019. Молекулярные механизмы температурной акклимации и адаптации в морских диатомах. Журнал ISME, DOI: 10.1038/s41396-019-0441-9

4. Orfanidis S, et al. 2019. Решение неудовлетворительной эвтрофикации цианобактерий посредством биотехнологии. Прикладные науки 9(12): 2566

5. Sicora C I, et al. 2019. Регулирование функции PSII вЦианотецаsp. ATCC 51142 в светло-темном цикле. Исследования фотосинтеза 139(1–3): 461–473

6. Smythers A L, et al. 2019. Характеризация влияния стиха наХлорелла вульгарисНецелевой организм. Химиосфера 219: 704-712

7. Albanese P, et al. 2018. Модуляция протеома тилакоида в растениях гороха, выращенных при различных облучениях: количественное протеомное профилирование вМодельный организм с помощью интеграции транскриптомических данных. Журнал растений 96(4): 786-800

8. Анталь Т, Конюхов И, Волгушева А и др. 2018. Хлорофилловая флуоресцентная индукционная и релаксационная система для непрерывного мониторинга фотосинтетической способности в фотобиореакторах. Физиологический плантарум. DOI: 10.1111/ppl.12693

9. Антал Т. К., Маслаков А., Яковлева О. В. и др. 2018. Моделирование кинетики роста и распада флуоресценции хлорофилла и изменений поглощительности, связанных с P700, с использованием метода Монте-Карло, основанного на правилах. Исследования фотосинтеза. DOI:10.1007/s11120-018-0564-2

10.Biswas S, Eaton-Rye J J, et al. 2018. PsbY необходим для предотвращения фотоповреждения фотосистемы II в мутанте, не имеющем PsbM.Синехоцистsp. PCC 6803. Фотосинтеза, 56(1), 200–209.

11.Bonisteel E M, et al. 2018. Специфические различия штамма в скоростях восстановления Фотосистемы II у пикоцианобактерий коррелируют с различиями в уровнях белка FtsH и образцах экспрессии изоформ. ПЛОС ОН 13(12): e0209115.

12.Fang X, et al. 2018. Транскриптомные реакции морской цианобактерииПрохлорококкапродукты вирусного лиза. Микробиология окружающей среды, doi: 10.1101/394122.

13.Kuthanová Trsková E, Belgio E, Yeates A M, et al. 2018. Чувствительность антенны к протонам определяет стратегию сбора фотосинтетического света, Journal of Experimental Botany 69(18): 4483-4493